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一種是用beta巰基乙醇打開蛋白質分子二硫鍵的，另一種是用DTT(二硫蘇糖醇)。兩者的作用是一樣的，但特點不一樣，前者更容易與氧氣反應，穩(wěn)定性比后者差，如果在常溫下暴露在空中，前者只能維持24小時的活性，后者卻可以維持7天左右。所以該如何選擇?如果是蛋白樣品較少，跑幾次就可以用完的樣品，這時選擇beta巰基乙醇。如果樣品很多，計劃跑上幾十次的，優(yōu)先選擇DTT,建議變性后分裝保存。二、SDS-PAGE凝膠配制1、配膠前準備首先強調一下，一塊好的膠是跑好蛋白的前提，所以這個環(huán)節(jié)也不容忽視。玻璃板的選擇，一種是1毫米厚度的，另一種是，這個厚度選擇也是有講究的，如果上樣體積小于10微升，優(yōu)先選1毫米，否則選。原因是什么?答案在轉膜部分揭曉。還有分離膠的濃度也要選擇適合的。然后玻璃板和梳子要洗干凈，晾干。裝板，注意厚板和薄板的底部要對齊，否則會漏膠。加制膠的各成分前，要觀察液體是否有沉淀，有沉淀的盡量不要用。2、制膠按配方說明依次加入各組分，加完SDS后先簡單手動搖勻幾下，然后迅速加入過硫酸銨和TEMED,搖勻，緊接著就灌膠。然后我習慣用95%的酒精壓膠，我也用過純水，感覺純水壓沒那么好，由于水的密度較大，會把分界處的膠壓得膨大。黑龍江乳鼠科研技術服務服務干貨分享 | 瓊脂糖核酸電泳，選擇紫外還是藍光？

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首先，預實驗必須要當做正式實驗來對待（態(tài)度要放端正，這是必須的）。預實驗的每一步都需要詳細規(guī)劃，多方籌謀。不論是實驗動物的選擇，還是檢測試劑的購買，都盡量和正式實驗統(tǒng)一標準。建議大家先把所有試劑和購買完畢后，再去購買實驗動物。因為動物會長胖，長胖后給劑量就要增加，不僅多花錢，并且還容易影響實驗效果。筆者曾經提前將實驗動物買回，但因為特殊原因沒能購買到造模，終只能忍痛割愛將動物贈送他人，白白虧了一筆血汗錢（那批老鼠在我這兒白吃白喝長得太胖，沒辦法用作造模）。動物及試劑購買首先需要考慮：實驗動物品種、體重、性別、周齡（通常根據(jù)既往文獻報道可以獲得答案）、數(shù)量（需要考慮到實驗有一定動物死亡率或者動物本身會打架互毆，因此需要提前購買足夠的動物）。動物購買的途徑、安置的地點，飲食管理（一般實驗室會有動物房，也可以從其他地方購買），動物免證明、倫理證明需要提前準備好。實驗相關的試劑和：比如造模和，動物干預所需，陽性選擇及購買（有些購買很困難，必須通過特殊程序才能買到）。如果涉及到有創(chuàng)操作，要提前準備好（建議提前購買），手術。需要了解自身實驗平臺能完成哪些技術。原代心肌細胞培養(yǎng)傳代。

圖2MAZTER-Seq實驗流程圖圖3MAZTER-MINE分析m6A示意圖接下來作者便是要驗證這一新方法的可行性了。在酵母中敲除IME4的情況下，檢測到的剪切效率高于野生型（剪切效率高低m6A水平），m6A抗體富集后的樣品剪切效率也低于未富集的Input組。整體水平可靠，那檢測的特異性位點是否準確呢？作者也將該方法檢測到的新甲基化位點使用放射標記層析檢測，發(fā)現(xiàn)預測的位點準確存在而且與剪切效率相符合。如圖5所示。而圖6中，作者則是與m6A抗體IP的方法進行了比較，也證實了這一方法的可行性。圖5MAZTER-Seq檢測結果驗證圖6MAZTER-Seq與m6A-Seq比較分析此外，后文中作者也在大規(guī)模的CRISPR-Cas9改變m6A狀態(tài)和酵母減數(shù)分裂模型中檢測了MAZTER-Seq這一系統(tǒng)；并進一步通過這一方法檢測了哺乳動物不同細胞間m6A水平的保守性；也探究了去甲基化酶FTO對整體m6A甲基化水平的影響等。這里小編主要給大家分享這一新技術，其他部分暫不過多分析了。新的技術能拓展我們的研究內容；對于這一技術。細胞器是細胞內的各種功能結構，如線粒體、內質網(wǎng)、高爾基體等，它們各自承擔著不同的生理功能。乳鼠科研技術服務實驗室

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1.首要原則：細胞不重要情況下立即丟棄，培養(yǎng)箱滅菌，所用培養(yǎng)基也都要丟棄，器械等重新滅菌或拆用新的。2.細菌污染一般都救不回來了，發(fā)現(xiàn)的時候培養(yǎng)基一般都很渾濁且細胞都死了3.污染且細胞很重要時：遇到念球菌污染，且細胞為基因改造細胞，非常重要。如231貼壁乳腺細胞，發(fā)現(xiàn)細胞周圍出現(xiàn)很小的串珠透亮圓點，非常像念球菌污染，此時細胞狀態(tài)尚可，且污染少。處理如下：用預熱或室溫PBS清洗3次，可適當振搖，將污染沖洗下來。隨后加入10-20%雙抗到培養(yǎng)瓶，置于37度培養(yǎng)箱1h，之后再用PBS清洗三遍，直至視野下無可見污染。此時細胞也被沖下大部分，因此此方法只適用在細胞貼壁強，狀態(tài)好，密度高時使用。之后每天再更換培養(yǎng)基，每次用PBS沖洗2遍。過幾天細胞狀態(tài)尚可時，消化離心時用500r，3min，去掉上清，重復3次。這個方法是根據(jù)文獻可利用念球菌和細胞體積重量差異實現(xiàn)分離?；旧线@一步做完以后，污染就基本了，接下來就注意多觀察，勤換液就行。湖南小鼠科研技術服務外包